l 细胞鉴定

STR鉴定已通过

l 细胞来源

国家资源库

l 细胞背景

1964年源自一位44岁白人女性，HT-29细胞系由J.Fogh用移植培养方法和含15%FBS的F12培养液从原发性肿瘤分离。近来，已建株的培养细胞用含血清McCoy’s 5A培液培养。在裸鼠中；形成与结肠原发性（I 级）一致的分化良好的腺癌；用类固醇治疗的仓鼠也会形成肿瘤。

注意：在 PubMed= 11921276 中指出起源于肠直肠乙状结肠部分的腺癌，但仅在最早的出版物 (DOI= 10.1007/978-1-4757-1647-4_5 ) 中指出为结肠腺癌。

l 细胞特性

1） 来源：结肠癌

2） 形态：上皮细胞样，贴壁生长

3） 含量：>1x106  细胞数

4） 规格：T25瓶或者1mL冻存管包装

5)  用途：仅供科研使用。

l 培养条件：

1）准备McCOY's 5A（推荐awcell-0011）培养基；优质胎牛血清，10%；双抗，1%.

2) 培养条件： 气相：空气，95%；二氧化碳，5%。 温度：37摄氏度，培养箱湿度为70%-80%。

l 注意事项：

注意事项：HT-29复苏后第一周可能会有大量漂浮细胞，可更换新鲜培养液，同时将漂浮的细胞离心收集后加回到培养瓶中与贴壁细胞共同培养。新复苏的细胞会以补丁形态三维接触生长（即不是单层扁平生长），待细胞分裂生长后将会变回上皮细胞形态单层扁平生长。

1. 弃去培养上清，用不含钙、镁离子的PBS润洗细胞1-2次。

2. 加入0.25％（w / v）胰蛋白酶-0.53 mM EDTA于培养瓶中（T25瓶1-2mL，T75瓶2-3mL），置于37℃培养箱中消化1-2分钟（难消化的细胞可以适当延长消化时间），然后在显微镜下观察细胞消化情况，若细胞大部分变圆并脱落，迅速拿回操作台，轻敲几下培养瓶后加入3-4ml含10%FBS的培养基来终止消化。

3.轻轻打匀后吸出，在1000RPM条件下离心3-5min，弃去上清液，补加1-2mL培养液后吹匀。将细胞悬液按1：2的比例分到新T25瓶中，添加6-8ml按照说明书要求配置的新的*培养基以保持细胞的生长活力，后续传代根据实际情况按1:2~1:5的比例进行。

3）细胞冻存: 收到细胞后建议在培养前3代时冻存一批细胞种子以备后续实验使用。

4）运输用的培养基（灌液培养基）不能再用来培养细胞，请换用按照说明书细胞培养条件新配制的*培养基来培养细胞。  收到细胞后第一次传代建议T25培养瓶1：2传代 。

l 运输形式：

低温：（1）1mL冻存管包装干冰运输，收到后-80度冰箱保存过夜后转入液氮或直接复苏，若发现干冰已挥发干净、冻存管瓶盖脱落、破损及细胞有污染，请立即与我们联系。

常温（2） T25瓶复苏的存活细胞常温发货，收到后按照细胞接收后的处理方法操作。

l 生物安全

 1. 所有动物细胞均视为有潜在的生物危害性，必须在二级生物安全台内操作，并请注意防护，所有废液及接触过此细胞的器皿需要灭菌后方能丢弃。

2. 建议在复苏冻存细胞时始终使用防护手套、衣服和戴上防护面罩。注意：冻存管浸没在液氮中会泄漏，并会慢慢充满液氮。解冻时，液氮转化成气相可能导致容器爆炸或用危险力吹掉其盖子，从而产生飞扬的碎屑造成人员伤害。